19 лучших танцевальных студий по стрип пластике в Красноярск, Россия

Все стили танца в Красноярск, Россия → Стрип пластика — Красноярск, Россия

Список школ танца по стрип пластике в Красноярск, Россия. Здесь вы можете найти адреса и телефоны школ и студий, где проходят занятия, уроки и обучение по танцу Стрип пластика.
Выбрать зал и преподавателей, с которыми вы сможете научиться танцу теперь гораздо проще — на странице каждой студии мы даём ссылку на группу в социальной сети, где вы можете пообщаться с
тренерами и учениками.

Танец на пилоне ( Pole Dance )

Расписание занятий:

Artistic Pole dance

группа № 1-Продолжающие

Среда

14:00-15:30

Пятница

13:30-15:00

группа № 11-ПРОДОЛЖАЮЩИЕ

Среда

19:00-20:00

Восресенье

12:00-13:30

группа № 2-НАЧИНАЮЩИЕ

Понедельник

15:00-16:00

Среда

15:30-16:30

группа № 3-ПРОДОЛЖАЮЩИЕ. НАБОР!!!

Понедельник

17:30-18:30

Среда

16:30-17:30

группа № 4-ПРОДОЛЖАЮЩИЕ

Вторник

17:00-18:30

Пятница

16:30-18:00

группа № 5-НАЧИНАЮЩИЕ. Набор!

Пятница

18:00-19:00

Восресенье

11:00-12:00

группа № 6-ПРОДОЛЖАЮЩИЕ

Понедельник

20:00-21:00

Среда

20:00-21:00

группа № 7-ПРОДОЛЖАЮЩИЕ

Вторник

19:30-21:00

Восресенье

18:30-20:00

группа № 8-НАЧИНАЮЩИЕ.НАБОР!!!

Пятница

20:00-21:00

Восресенье

17:30-18:30

группа № 9-ПРОДОЛЖАЮЩИЕ

Вторник

19:30-21:00

группа №10-ПРОДОЛЖАЮЩИЕ

Четверг

21:00-22:00

Exotic Pole Dance

группа № 1-НАЧИНАЮЩИЕ.НАБОР!!!

Вторник

12:30-14:00

Четверг

12:30-13:30

группа № 2-НАЧИНАЮЩИЕ. Набор!

Вторник

18.30 — 19.30

Четверг

18.30 — 19.30

группа № 3 -НАЧИНАЮЩИЕ. Набор!

Восресенье

18.30 — 19.30

Восресенье

19.30 — 20.30

Pole dance Fitness

группа № 1-НАЧИНАЮЩИЕ

Понедельник

13:30-15:00

Среда

12:30-14:00

группа № 2-НАЧИНАЮЩИЕ.НАБОР!!!

Вторник

15:30-17:00

Четверг

14:30-16:00

группа № 3-ПРОДОЛЖАЮЩИЕ.НАБОР!!!

Понедельник

16:00-17:30

Четверг

16:00-17:30

группа № 4-ПРОДОЛЖАЮЩИЕ

Среда

17:30-19:00

Восресенье

13:30-15:00

группа № 5-ПРОДОЛЖАЮЩИЕ.НАБОР!!!

Понедельник

18:30-20:00

Четверг

17:30-18:30

группа № 6-ПРОДОЛЖАЮЩИЕ

Четверг

19:30-21:00

Восресенье

15:00-16:30

Pole Dance дети

группа № 1-НАЧИНАЮЩИЕ

Пятница

19:00-20:00

Восресенье

16:30-17:30

Стоимость занятий:

Pole Dance дети

Одно занятие

1 ч. – 550 р.
1,5 ч. – 800 р.

Абонемент

4 занятий (1 час) – 1 350 р.
8 занятий (1 час) – 2 650 р.
12 занятий (1 час) – 3 650 р.
8 занятий (10 часов) – 3 300 р.
4 занятий (1,5 часа) – 2 000 р
8 занятий (1,5 часа) — 3 650 р

Описание танца:

Exotic pole dance – это, пожалуй, самое танцевальное направление в poledance.

Экзотик пол дэнс – это сочетание двух направлений: стрип-пластики и пол дэнс.

Упор делается не только на акробатические трюки, но и на танцевальные связки вокруг пилона и в партере (на полу).

Экзотик пол дэнс скорее состояние души. Телодвижения здесь лишь сопровождают, оформляют эмоции. Страсть, эротика, экзотичность – это смысл этого стиля.

Pole Exotic – это самый чувственный танец, в котором трюки присутствуют в меньшей степени, а акцент делается на элементы хореографии, пластики, музыкальность.

Ошибочное мнение считать, что этот стиль не имеет достаточно нагрузки. Трюковая база в этом направлении тоже присутствует, организм ощущает нагрузку, ничем не отличающейся от силовой.

Приглашаем на Ваш первый бесплатный урок.

Underscore InOut Pixel Top Bend 16 мм

Поиск

Ваш поиск не дал результатов

Поиск кода

Найдите нужные вам коды продуктов, отфильтровав весь наш ассортимент.

Найти коды

Искатель кода

Подробная информация о продукте

• Линейный светильник со светодиодами RGBW (4000K CRI 80 белых светодиодов).
• Накладной монтаж с помощью профилей (прямые линии) или зажимов (изогнутые линии).
• Реализован на гибкой цепи белого цвета 24 В пост. тока длиной от 337 мм до 7004 мм (доступно 10 длин).
• Светодиодная лента может управляться по протоколу SPI с адресацией через каждые 83,3 мм (шаг пикселя).
• Светодиодная схема имеет полностью IP68-герметизацию с высокоэффективной белой (внешняя) и опаловой (излучающая поверхность) полимерной оболочкой: материал можно использовать и устанавливать даже при экстремальных температурах от -30 °C до +45 °C.
• Равномерное освещение без видимых точек обеспечивается по всему профилю полосы до концевых частей.
• В комплекте с кабелями L = 80 мм, а также штыревыми (входной кабель) и гнездовыми (выходной кабель) разъемами для однонаправленного подключения, IP68, снабжены стопорной кольцевой гайкой.
• В комплекте с проводами из нержавеющей стали для ограничения пластической деформации корпуса, которая в противном случае может повредить схему светодиода.
• Устойчив к соляным растворам, ультрафиолетовым лучам и растворителям.
• Ударопрочность IK10.
• Температура контакта <40°.
• Защита IP68 для продукта и кабеля с использованием разъемов IP68.
• Продукт не подходит для установки в бассейнах и фонтанах.

Доступные цвета для Underscore InOut Pixel Top Bend 16mm

• 01 Белый

Хотите узнать больше?

Нажмите, чтобы перейти на нашу страницу «Свяжитесь с нами», где вы можете отправить нам запрос.

Сделать запрос

Подчеркнуть InOut Configurator

Вдохновение благодаря интеграции даже в экстремальных условиях

Всего за несколько шагов мы поможем вам создать настройку, которая наилучшим образом соответствует требованиям вашего проекта, включая определение списка кодов и правильную процедуру установки.

Использовать Underscore InOut Configurator

Фильтровать коды по:

Пожалуйста, выберитеRGBWЦветовая температура

Пожалуйста, выберитеSPIControl

Пожалуйста, выберитеGL — Общее освещениеОптика

Пожалуйста, выберитеIP68Рейтинг IP-защиты

Товары не найдены

Подчеркивание Ввод Строка

• iGuzzini

  Подчеркивание
  Боковой изгиб 10 мм

• org/Product»>

  iGuzzini

  Подчеркивание
  Боковой изгиб 16 мм

• iGuzzini

  Подчеркивание
  Верхний изгиб 16 мм

• iGuzzini

  Подчеркивание
  Верхний изгиб 16 мм погружение

• org/Product»>

  iGuzzini

  Подчеркивание
  Ухмылка

Подчеркивание InOut Pixel

Скин-чейнджер

Новая версия Underscore InOut Pixel изменяет внешний вид фасадов и городских объектов с плавными, непрерывными эффектами изменения цвета.

Underscore InOut Pixel допускает различную адресацию на минимальной длине 83,3 мм, что эквивалентно 48 различным адресам на метр. Разрешение 12 пикселей/м. Технология SPI обеспечивает высокую скорость перехода цвета и абсолютно простое подключение для разработки динамических световых эффектов и воспроизведения видео, управляемых с помощью систем Art-Net.

Открой для себя больше

Открытие аптамеров ДНК, нацеленных на белок нуклеокапсида SARS-CoV-2 и эпитопы, связывающие белок, для безметочной диагностики COVID-19

1. Li G., De Clercq E. Терапевтические возможности для нового коронавируса 2019 г. Нац. Преподобный Друг Дисков. 2020;19:149–150. [PubMed] [Google Scholar]

2. Всемирная организация здравоохранения (2022 г.). Информационная панель ВОЗ по коронавирусу (COVID-19). https://covid19.who.int/.

3. Удугама Б., Кадиресан П., Козловски Х.Н., Малекджахани А., Осборн М., Ли В.Ю.К., Чен Х., Мубарека С., Губбай Дж.Б., Чан В.К.В. Диагностика COVID-19: болезнь и инструменты для обнаружения. АКС Нано. 2020;14:3822–3835. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

4. Юце М., Филизтекин Э., Озкая К.Г. Диагностика COVID-19 — обзор современных методов. Биосенс. Биоэлектрон. 2021;172:112752. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

5. Lu R., Zhao X., Li J., Niu P., Yang B., Wu H., Wang W., Song H., Huang B. ., Чжу Н. и др. Геномная характеристика и эпидемиология нового коронавируса 2019 года: последствия для происхождения вируса и связывания с рецептором. Ланцет. 2020;395: 565–574. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

6. Ян Х., Рао З. Структурная биология SARS-CoV-2 и значение для терапевтической разработки. Нац. Преподобный Микробиолог. 2021; 19: 685–700. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

7. Смирлаки И., Экман М., Лентини А., Руфино де Соуза Н., Папаниколау Н., Вондрачек М., Аарум Дж., Сафари Х., Мурадрасоли С., Ротфукс А.Г. и др. Массовое и быстрое тестирование на COVID-19 возможно с помощью ОТ-ПЦР на SARS-CoV-2 без экстракции. Нац. коммун. 2020;11:4812. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

8. Донг Л., Чжоу Дж., Ню С., Ван К., Пан Ю., Шэн С., Ван С., Чжан Ю., Ян Дж., Лю М. и др. Высокоточное и чувствительное диагностическое обнаружение SARS-CoV-2 с помощью цифровой ПЦР. Таланта. 2021;224:121726. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

9. Vogels CBF, Brito A.F., Wyllie A.L., Fauver J.R., Ott I.M., Kalinich C.C., Petrone M.E., Casanovas-Massana A., Catherine Muenker M., Moore A.J. , и другие. Сравнение аналитической чувствительности и эффективности наборов праймеров и зондов для SARS-CoV-2 RT-qPCR. Нац. микробиол. 2020;5:1299–1305. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

10. Хван Ю.-К., Лу Р.-М., Су С.-К., Чанг П.-Ю., Ко С.-Х. , Ке Ф.-Ю., Лян К.-Х., Се Т.-Ю., Ву Х.-К. Моноклональные антитела для терапии COVID-19 и обнаружения SARS-CoV-2. Дж. Биомед. науч. 2022;29:1. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

11. Yakoh A., Pimpitak U., Rengpipat S., Hirankarn N., Chailapakul O., Chaiyo S. Электрохимический биосенсор на бумажной основе для диагностики COVID-19: обнаружение антител и антигена SARS-CoV-2. Биосенс. Биоэлектрон. 2021;176:112912. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

12. Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США (2022 г. ). In Vitro Diagnostics EUA — диагностические тесты на антигены для SARS-CoV-2. https://www.fda.gov/medical-devices/coronavirus-disease-2019-covid-19-emergency-use-authorizations-medical-devices/in-vitro-diagnostics-euas-antigen-diagnostic-tests-sars- ков-2.

13. Мачадо Б.А.С., Ходел К.В.С., Барбоза-Жуниор В.Г., Соареш М.Б.П., Бадаро Р. Основные молекулярные и серологические методы диагностики COVID-19: обзор на основе литературы. Вирусы. 2020;13:40. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

14. Ван Д., Хе С., Ван С., Ян Ю., Лю Дж., Ву С., Лю С., Лэй Ю., Чен М. ., Ли Л. и др. Быстрый иммуноанализ с латеральным потоком для флуоресцентного обнаружения РНК SARS-CoV-2. Нац. Биомед. англ. 2020;4:1150–1158. [PubMed] [Google Scholar]

15. Wang Q., Tan L., Wu W., Tang S., Xiong Z., Zheng S. Оценка иммуноферментных анализов на основе нуклеокапсида и шиповидных белков для обнаружения антител против SARS-CoV-2. Дж. Клин Микробиол. 2020; 58 e00461–20. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

16. Chen Z., Zhang Z., Zhai X., Li Y., Lin L., Zhao H., Bian L., Li P., Yu L., Wu Y., Lin G. Быстрый и чувствительный обнаружение анти-SARS-CoV-2 IgG с использованием иммуноанализа с латеральным потоком на основе наночастиц, легированных лантанидами. Анальный. хим. 2020; 92: 7226–7231. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

17. Liu G., Rusling J.F. Тесты на антитела к COVID-19 и их ограничения. ACS Sens. 2021; 6: 593–612. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

18. Poolsup S., Kim C.-Y. Терапевтическое применение синтетических аптамеров нуклеиновых кислот. Курс. мнение Биотехнолог. 2017;48:180–186. [PubMed] [Академия Google]

19. Li L., Xu S., Yan H., Li X., Yazd H.S., Li X., Huang T., Cui C., Jiang J., Tan W. Аптамеры нуклеиновых кислот для молекулярной диагностики и терапии : достижения и перспективы. Ангью. хим., межд. Эд. англ. 2021;60:2221–2231. [PubMed] [Google Scholar]

20. Tuerk C., Gold L. Систематическая эволюция лигандов путем экспоненциального обогащения: РНК-лиганды ДНК-полимеразы бактериофага T4. Наука. 1990; 249: 505–510. [PubMed] [Google Scholar]

21. Эллингтон А.Д., Шостак Дж.В. Отбор молекул РНК, связывающих определенные лиганды, in vitro. Природа. 1990;346:818–822. [PubMed] [Google Scholar]

22. Чо С.-Дж., Ву Х.-М., Ким К.-С., О Дж.-В., Чон Ю.-Дж. Новая система для обнаружения белка нуклеокапсида коронавируса SARS с использованием аптамера одноцепочечной ДНК. Дж. Биоски. биоинж. 2011; 112: 535–540. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

23. Zou X., Wu J., Gu J., Shen L., Mao L. Применение аптамеров для обнаружения вирусов и противовирусной терапии. Передний. микробиол. 2019;10:1462. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

24. Song Y., Song J., Wei X., Huang M., Sun M., Zhu L., Lin B., Shen H., Zhu Z. ., Yang C. Открытие аптамеров, нацеленных на рецептор-связывающий домен шиповидного гликопротеина SARS-CoV-2. Анальный. хим. 2020;92:9895–9900. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

25. Schmitz A., Weber A. , ​​Bayin M., Breuers S., Fieberg V., Famulok M., Mayer G. Всплеск SARS-CoV-2 связывающий ДНК-аптамер, который ингибирует псевдовирусную инфекцию по независимому от RBD механизму. Ангью. хим., межд. Эд. англ. 2021;60:10279–10285. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

26. Liu X., Wang Y.L., Wu J., Qi J., Zeng Z., Wan Q., Chen Z., Manandhar P., Cavener VS, Бойл Н.Р. и соавт. Нейтрализующие аптамеры блокируют взаимодействие S/RBD-ACE2 и предотвращают инфицирование клетки-хозяина. Ангью. хим., межд. Эд. англ. 2021;60:10273–10278. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

27. Савастано А., Ибаньес де Опакуа А., Ранкович М., Цвекштеттер М. Нуклеокапсидный белок фазы SARS-CoV-2 разделяется на богатые РНК конденсаты, содержащие полимеразу. Нац. коммун. 2020;11:6041. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [Google Scholar]

28. Chen Z., Wu Q., Chen J., Ni X., Dai J. Метод на основе аптамера ДНК для обнаружения нуклеокапсидного белка SARS-CoV-2 . Вирол. Грех. 2020; 35: 351–354. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

29. Che X.-Y., Hao W., Wang Y., Di B., Yin K., Xu Y.-C., Feng C.- С., Ван З.-Ю., Ченг В.К.С., Юэн К.-Ю. Нуклеокапсидный белок как ранний диагностический маркер ОРВИ. Эмердж. Заразить. Дис. 2004;10:1947–1949. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

30. Zhang L., Fang X., Liu X., Ou H., Zhang H., Wang J., Li Q., ​​Cheng H., Zhang W ., Луо З. Открытие аптамеров ДНК нуклеокапсидного белка COVID-19 сэндвичевого типа. хим. коммун. 2020;56:10235–10238. [PubMed] [Google Scholar]

31. Ge C., Feng J., Zhang J., Hu K., Wang D., Zha L., Hu X., Li R. Сэндвич-метод аптамер/антитело для цифрового обнаружения нуклеокапсидного белка SARS-CoV2. Таланта. 2022;236:122847. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

32. Ramanathan S., Gopinath S.C.B., Ismail Z.H., Md Arshad M.K., Poopalan P. Аптасенсорный нуклеокапсидный белок на золотых встречно-штыревых электродах, собранных из наноалмазов, для импедиметрической оценки инфекционных заболеваний SARS-CoV-2. Биосенс. Биоэлектрон. 2022;197:113735. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

33. Chen R., Kan L., Duan F., He L., Wang M., Cui J., Zhang Z., Zhang Z. Поверхностный плазмонный резонанс аптасенсор на основе квантовых точек карбида ниобия MXene для детекции нуклеокапсида SARS-CoV-2. Микрохим. Акта. 2021;188:316. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

34. Березовский М.В., Лехманн М., Мушеев М.Ю., Мак Т.В., Крылов С.Н. Обнаружение биомаркеров с помощью аптамера (AptaBiD) J. Am. хим. соц. 2008; 130:9137–9143. [PubMed] [Google Scholar]

35. Müller-Esparza H., Osorio-Valeriano M., Steube N., Thanbichler M., Randau L. Биослойный интерферометрический анализ активности связывания мишени эффекторных комплексов CRISPR-Cas . Передний. Мол. Бионауч. 2020;7:98. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

36. Алам К.К., Чанг Дж.Л., Берк Д.Х. FASTAptamer: биоинформатический инструментарий для высокопроизводительного анализа последовательностей комбинаторного отбора. Мол. тер. Нуклеиновые кислоты. 2015;4:e230. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

37. Мадейра Ф., Пирс М., Тиви А.Р.Н., Басуткар П., Ли Дж., Эдбали О., Мадхусуданан Н., Колесников А., Лопес Р. Услуги инструментов поиска и анализа последовательности от EMBL-EBI в 2022 г. , Рез. нуклеиновых кислот. 2022;50:W276–W279. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

38. Рейтер Дж. С., Мэтьюз Д. Х. Структура РНК: программное обеспечение для прогнозирования и анализа вторичной структуры РНК. БМК Биоинф. 2010;11:129. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

39. Batéjat C., Grassin Q., Manuguerra J.C., Leclercq I. Тепловая инактивация коронавируса тяжелого острого респираторного синдрома 2. J. Biosaf. Биосекур. 2021; 3:1–3. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

40. Паттерсон Э.И., Принс Т., Андерсон Э.Р., Касас-Санчес А., Смит С.Л., Кансадо-Утрилла С., Соломон Т., Гриффитс М.Дж., Акоста-Серрано А., Черепаха Л. и др. Методы инактивации SARS-CoV-2 для последующих биологических анализов. Дж. Заразить. Дис. 2020; 222:1462–1467. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

41. Дельпуеч О., Даутуэйт Дж. А., Хилл Т., Ниранджан Д., Малинтан Н. Т., Дювуазен Х., Эллиот Дж., Гудфеллоу И., Хосмилло М., Ортон А.Л. и др. Тепловая инактивация клинического COVID-19образцы в промышленных масштабах для низкорисковых и эффективных высокопроизводительных диагностических тестов qRT-PCR с высокой пропускной способностью. науч. 2022; 12:2883. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

и другие. IDT SciTools: пакет для анализа и дизайна олигомеров нуклеиновых кислот. Нуклеиновые Кислоты Res. 2008; 36:W163–W169. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

43. Boniecki M.J., Lach G., Dawson W.K., Tomala K., Lukasz P., Soltysinski T., Rother K.M., Bujnicki J.M. SimRNA: крупнозернистый метод для моделирования сворачивания РНК и предсказания трехмерной структуры. Нуклеиновые Кислоты Res. 2016;44:e63. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

44. Хамфри В., Далке А., Шультен К. VMD: визуальная молекулярная динамика. Дж. Мол. График 1996; 14:33–38. 27-28. [PubMed] [Google Scholar]

45. Джедди И., Саиз Л. Трехмерное моделирование шпилек одноцепочечной ДНК для биосенсоров на основе аптамеров. науч. 2017;7:1178. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

46. Абрахам М.Дж., Муртола Т., Шульц Р., Палл С., Смит Дж.К., Хесс Б., Линдал Э. GROMACS: высокоэффективное молекулярное моделирование с помощью мульти- уровень параллелизма от ноутбуков до суперкомпьютеров. Программное обеспечениеX. 2015;1–2:19–25. [Google Scholar]

47. Ян Дж., Ян Р., Рой А., Сюй Д., Пуассон Дж., Чжан Ю. Набор I-TASSER: предсказание структуры и функции белка. Нац. Методы. 2015; 12:7–8. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

48. Санкарараман С., Хамре Дж., 3-й, Альмснед Ф., Алжуи А., Бохари Ю., Алаввад М., Аломаир Л., Джафри М.С. Прогнозирование активного сайта фосфорилированного N-белка SARS-CoV-2 с использованием молекулярного моделирования. Поставить в известность. Мед. Разблокирован. 2022;29:100889. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

49. Ян Ю., Тао Х., Хе Дж., Хуан С.-Ю. Сервер HDOCK для интегрированной стыковки белок-белок. Нац. протокол 2020; 15: 1829–1852. [PubMed] [Google Scholar]

50. Дяо Б., Вэнь К., Чжан Дж., Чен Дж., Хан С., Чен Ю., Ван С., Дэн Г., Чжоу Х., У Ю. Точность экспресс-теста антигена нуклеокапсидного белка в диагностике инфекции SARS-CoV-2. клин. микробиол. Заразить. 2021;27:289.e1–289.e4. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

51. Сингх Н.К., Рэй П., Карлин А.Ф., Магалланес К., Морган С.К., Лоран Л.К., Аронофф-Спенсер Э.С., Холл Д.А. Попадание в диагностическую золотую середину: тестирование антигена слюны SARS-CoV-2 по месту оказания медицинской помощи с помощью стандартного глюкометра. Биосенс. Биоэлектрон. 2021;180:113111. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

52. Lee J.M., Kim C.R., Kim S., Min J., Lee M.-H., Lee S. Одноминутный диагностический анализ SARS-CoV-2 «смешивай и читай»: разработка аптасенсор. хим. коммун. 2021;57:10222–10225. [PubMed] [Google Scholar]

53. Крайцберг Ю., Храпко К. Одномолекулярная ПЦР: безартефактная ПЦР для анализа соматических мутаций. Эксперт Преподобный Мол. Диагн. 2005; 5: 809–815. [PubMed] [Google Scholar]

54. Ouellet E., Foley J.H., Conway E.M., Haynes C. Hi-Fi SELEX: высокоточная цифровая ПЦР-платформа для обнаружения терапевтических аптамеров. Биотехнолог. биоинж. 2015; 112:1506–1522. [PubMed] [Академия Google]

55. Дхиман А., Ананд А., Малхотра А., Хан Э., Сантра В., Кумар А., Шарма Т.К. Рациональное усечение аптамера для межвидового применения для обнаружения отравления крайтом. науч. 2018; 8:17795. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

56. Ruscito A., DeRosa M.C. Аптамеры, связывающие малые молекулы: стратегии отбора, характеристика и применение. Передний. хим. 2016;4:14. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

57. Гупта А., Ананд А., Джайн Н., Госвами С., Анантарадж А., Патил С., Сингх Р. , Кумар А., Шривастава Т. ., Бхатнагар С. и др. Новый тест на тримерный антиген шипа на основе G-квадруплексного аптамера для обнаружения SARS-CoV-2. Мол. тер. Нуклеиновые кислоты. 2021; 26: 321–332. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

58. Wang X., Gao X., He J., Hu X., Li Y., Li X., Fan L., Yu H.-Z. Систематическое усечение аптамеров для создания высокоэффективных аптасенсоров на основе оксида графена (GO) для мультиплексного обнаружения микотоксинов. Аналитик. 2019;144:3826–3835. [PubMed] [Google Scholar]

59. Ву С., Кави А.Дж., Хашим А., Кавиан Н., Коул А.Р., Мойл А.Б., Вагнер Н.Д., Суини-Гиббонс Дж., Рорс Х.В., Гросс М.Л. и др. Характеристика нуклеокапсидного белка SARS-CoV-2 выявляет множественные функциональные последствия С-концевого домена. iНаука. 2021;24:102681. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

60. Gao T., Gao Y., Liu X., Nie Z., Sun H., Lin K., Peng H., Wang S. Идентификация и функциональный анализ нуклеокапсидного белка SARS-COV-2. БМС микробиол. 2021;21:58. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

61. Cennamo N., Pasquardini L., Arcadio F., Lunelli L., Vanzetti L., Carafa V., Altucci L., Zeni L. SARS-CoV -2 обнаружение спайкового белка с помощью плазмонного D-образного пластикового оптоволоконного аптасенсора. Таланта. 2021;233:122532. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

62. Льюис Т., Жиру Э., Йович М., Мартик-Милн С. Локализованный поверхностный плазмонный резонансный аптасенсор для селективного обнаружения белка S1 SARS-CoV-2. Аналитик. 2021;146:7207–7217. [PubMed] [Google Scholar]

63. Айтал С., Мишрики С., Гупта Р., Саху Р.П., Ботос Г., Танвир С., Хансон Р.В., Пури И.К. Обнаружение SARS-CoV-2 с помощью функционализированных аптамерами наночастиц золота. Таланта. 2022;236:122841. [PMC бесплатная статья] [PubMed] [Google Scholar]

, Паулино С. и др. Молекулярное тестирование слюны без выделения РНК подходит для мониторинга и диагностики инфекции SARS-CoV-2 у детей. ПЛОС Один. 2022; 17:1–15. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

65. Шривастава А., Гупта В. Методы определения предела обнаружения и предела количественного определения аналитическими методами. Хроники молодых ученых. 2011;2:21–25. [Google Scholar]

66. Cox J., Mann M. MaxQuant обеспечивает высокую скорость идентификации пептидов, индивидуализированную точность массы в диапазоне ppb и количественный анализ белков в масштабах всего протеома. Нац. Биотехнолог. 2008; 26:1367–1372. [PubMed] [Google Scholar]

67. Cox J., Neuhauser N., Michalski A., Scheltema R.A., Olsen J.V., Mann M. Andromeda: поисковая система пептидов, интегрированная в среду MaxQuant. J. Proteome Res. 2011;10:1794–1805. [PubMed] [Google Scholar]

68. Нагарадж Н., Кулак Н.А., Кокс Дж., Нойхаузер Н., Майр К., Хорнинг О., Ворм О., Манн М. Системный анализ возмущений с почти полным охватом протеома дрожжей с помощью однократной ультра-ВЭЖХ на настольной орбитальной ловушке. Мол. Клетка. Протеомика. 2012;11 М111.013722. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

69. Cox J., Hein M.Y., Luber C.A., Paron I., Nagaraj N., Mann M. экстракция соотношения пептидов, называемая MaxLFQ. Мол. Клетка. Протеомика. 2014;13:2513–2526. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

70. Цукер М. Веб-сервер Mfold для прогнозирования укладки нуклеиновых кислот и гибридизации. Нуклеиновые Кислоты Res. 2003; 31:3406–3415. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

71. Морозов Д., Миронов В., Морячков Р. В., Щугорева И. А., Артюшенко П. В., Замай Г. С., Коловская О. С., Замай Т. Н., Крат А. В., Молоденский Д. С. и др. . Роль SAXS и молекулярного моделирования в выяснении трехмерной структуры ДНК-аптамера против рака легких. Мол. тер. Нуклеиновые кислоты. 2021; 25: 316–327. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

72. Maier J.A., Martinez C., Kasavajhala K., Wickstrom L., Hauser K.E., Simmerling C. ff14SB: повышение точности параметров боковой цепи и скелета белка из ff99SB.